Efecto del Estrés en la Cuantificación de Bífidos Totales en Heces de Ratones BALB/C con Colitis Ulcerativa

Abstract

Introduction. Ulcerative colitis is a chronic inflammatory disease of the large intestine, which causes serious symptoms such as chronic diarrhea, abdominal pain and rectal bleeding, significantly affecting the quality of life of patients, where one of the factors that aggravate it is stress. There are various animal models to study the pathophysiology of UC, including that induced by dextran sodium sulfate (DSS). Studies have shown that stress alters intestinal homeostasis in murine models of UC, but it is not known how stress can alter intestinal bacterial populations in UC conditions. Therefore, the objective of this project was to analyze the effect of stress on the amount of bifidobacteria in mice with ulcerative colitis (UC). Materials and methods. For its development, fecal samples were collected from BALBc mice with UC and subjected to chronic stress. UC was induced by the administration of 3% DSS in the drinking water ad libitum during 7 days of treatment and stress was carried out on these days, which lasted a maximum of 2 hours. Samples were collected at two key times: before colitis induction and after colitis induction. The quantification of bifidobacteria in feces was carried out using TOS-MUP agar plates, followed by the quantification of colonyforming units per gram (CFU/g) to compare the amounts of bifidobacteria between the experimental groups and thus evaluate the impact of stress on the microbiota. Results. The results showed that the CFU/g in mice with UC subjected to stress is lower compared to mice with UC not subjected to stress, however, in the recovery week the opposite is observed since the CFU/ are higher for the groups. subjected to stress. Conclusion. Stress initially reduces bifidobacteria in mice with ulcerative colitis, but during the recovery phase an increase in these bacteria is observed in stressed mice, indicating possible adaptation mechanisms of the intestinal microbiota

Introducción. La colitis ulcerativa es una enfermedad inflamatoria crónica del intestino grueso, que provoca síntomas graves como diarrea crónica, dolor abdominal y sangrado rectal, afectando significativamente la calidad de vida de los pacientes, donde uno de los factores que la agravan es el estrés. Existen diversos modelos animales para estudiar la fisiopatología de la CU, entre ellos el inducido por el dextran sulfato de sodio (DSS). Estudios han demostrado que el estrés altera la homeostasis intestinal en modelos murinos de CU, pero no se conoce como el estrés puede alterar las poblaciones de bacterias intestinales en condiciones de CU. Por ello el objetivo de este proyecto fue analizar el efecto del estrés sobre la cantidad de bifidobacterias en ratones con colitis ulcerativa (CU). Materiales y métodos. Para su desarrollo se recolectaron muestras de heces de ratones BALBc con CU y sometidos a estrés crónico. La CU fue inducida por la administración de DSS al 3% de en el agua de los bebederos de forma ad libitum durante 7 días de tratamiento y el estrés se realizó en estos días que duro el tratamiento por máximo 2 horas. Las muestras se recolectaron en dos momentos clave: antes de la inducción de la colitis y tras la inducción de esta. La cuantificación de las bifidobacterias en las heces se realizó mediante placas de agar TOS-MUP, seguido de la cuantificación de unidadesformadoras de colonias por gramo (UFC/g) con el fin de comparar las cantidades de bifidobacterias entre los grupos experimentales y así evaluar el impacto del estrés en la microbiota. Resultados. Los resultados mostraron que las UFC/g en ratones con CU sometidos a estrés es menor a comparación a ratones con CU no sometidos a estrés, sin embargo, en la semana de recuperación se observa lo contrario ya que las UFC/ son mayores para los grupos sometidos a estrés. Conclusión. El estrés reduce inicialmente las bifidobacterias en ratones con colitis ulcerativa, pero durante la fase de recuperación se observa un incremento de estas bacterias en los ratones estresados, indicando posibles mecanismos de adaptación del microbiota intestinal.